Лабораторное отделение

Забор материала из носа, зева на дифтерию:

ПОДГОТОВКА К ДИАГНОСТИКЕ

  • Следует объяснить пациенту, что исследование выполняют с целью идентификации возбудителя, явившегося причиной его заболевания, а также для выявления носительства.

  • Каких-либо ограничений в диете или режиме питания перед исследованием не требуется.

ПРОЦЕДУРЫ

  • Забор материала должен проводиться из зева и носа  двумя  раздельными тампонами.

  • Пациента просят откинуть голову назад и закрыть глаза.

  • При хорошем освещении осматривают, пользуясь шпателем, горло.

  • Потирают ватным тампоном нёбные миндалины, особенно воспаленные и покрытые налетом участки.

  • Материал необходимо брать из зева, не касаясь слизистой оболочки полости рта или зубов, фиксируя шпателем язык. Если имеются пленки, материал берут на границе здоровой и пораженной ткани. Интервал между приемом пищи и взятием материала должен быть не менее 2 часов.  Если больной получал антибиотики, исследование проводят спустя 3 дня после окончания их приема.

  • При заборе материала используется  угольная транспортная среда Эймса, срок доставки материала в лабораторию не более 48 часов при температуре 20-25 °С.

  • При заборе материала без использования транспортной среды срок доставки материала в лабораторию не более 2 часов.

  • На бланке направления указывают противомикробные препараты, которые пациент недавно получал. На маркировке указывают, откуда взят материал (зев, нос), фамилии пациента и врача, дату и время взятия материала, подозреваемую инфекцию, особенно вызываемую С. diphtheriae.

ФАКТОРЫ, ВЛИЯЮЩИЕ НА РЕЗУЛЬТАТ ИССЛЕДОВАНИЯ:

    Неправильная техника взятия материала.

    Отсутствие указаний о проводимой пациенту противомикробной терапии на бланке направления в лабораторию (возможность ложноотрицательного результата).

    Задержка отправления материала в лабораторию (возможны скудный рост патогенных микроорганизмов и чрезмерный рост комменсалов).

 

Забор грудного молока на микрофлору и чувствительность к антибиотикам

Микробиологическое исследование грудного молока у кормящих женщин с целью выявления патогенных микроорганизмов и подбора лекарств для лечения. Основные показания к применению: мастит у кормящих матерей, дисбактериоз у детей находящихся на грудном вскармливании. Исследование назначают до приема антибиотиков и через несколько дней после курса лечения.

ПОДГОТОВКА К ДИАГНОСТИКЕ

  • Перед сцеживанием молока тщательно помойте руки и молочные железы с мылом, обработайте соски и околососковую область ватными тампонами, смоченными 70% спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном).

  • Сцедите первые 5-10 мл в отдельную посуду (т.к. эта порция молока не пригодна для исследования), последующие 4-5 мл сцедите в стерильный контейнер, старайтесь при этом не касаться краев контейнера телом.

  • Молоко из каждой железы собирайте в отдельный контейнер. После сцеживания плотно закройте крышку, стараясь не дотрагиваться краев контейнера руками.

ПРОЦЕДУРЫ

  • Исследование проводят до назначения антибиотиков.

  • Исследование проводят из левой и правой груди по отдельности.

  • Первая порция около 5 мл отбрасывается.

  • Сбор молока проводят в стерильный контейнер приблизительно по 5 мл.

  • Срок доставки в лабораторию в течение 2 часов

  • Срок хранения не более 24 часов при температуре 2-8 °С.

ФАКТОРЫ, ВЛИЯЮЩИЕ НА РЕЗУЛЬТАТ ИССЛЕДОВАНИЯ

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

  • Обнаружение микроорганизмов, которые способны вызвать развитие патологических процессов (например, S. aureus -Золотистый стафилококк; бактерии семейства Enterobacteriaceae).

ОТКЛОНЕНИЯ ОТ НОРМЫ

  • Обнаружение патогенный флоры - S. aureus и других микроорганизмов (стрептококки, энтеробактерии, грибы рода Кандида, синегнойная и кишечная полочки, эпидермальный стафилококк и другие).

 

Забор  МОЧИ для бактериологических исследований

  • 1.  Бактериологическое исследование мочи нужно проводить до начала антибактериальной терапии. Моча здорового человека стерильна.

  • 2.  Исследуют утреннюю порцию свободно выпущенной мочи в объеме 3-5 мл (за ночь концентрация бактерий в мочевом пузыре возрастает).

  • 3.  Не следует принуждать пациента к приему жидкости для форсирования диуреза, т.к. происходит разбавление мочи и снижение числа бактерий

  • 4.  Для сбора мочи используют стерильные емкости. Нельзя собирать мочу из мочеприемника или судна

  • 5.  Перед взятием мочи проводят тщательный туалет наружных половых органов с мылом и кипяченой водой

  • 6.  Доставка мочи в лабораторию должна осуществляться в максимально короткие сроки. Посев проводится не позднее 2 часов после взятия материала либо в течение 8 часов при условии ее хранения в холодильнике.

  • 7.  Взятие мочи следует повторить, если нет условий ее хранения в холодильнике, и с момента взятия образца прошло более 2 часов, в противном случае результаты анализа могут быть недостоверными.

  • 8.  Не рекомендуется исследовать мочу, полученную катетером

  • 9.  При наличии постоянного катетера протирают его наружное отверстие 70% спиртом, затем шприцом с иглой через отверстие собирают мочу и переносят ее в стерильную емкость, (нельзя собирать мочу из мешка!)

 

Забор кала на дисбактериоз

1. Стул, после которого осуществляется сбор кала на дисбактериоз, должен быть самопроизвольным. Для его стимуляции нельзя принимать слабительные препараты и делать клизмы.

2. Из рациона пациента на 1-3 дня до взятия материала исключают продукты, усиливающие процессы брожения в кишечнике, алкоголь.

3. Емкость для материала должна быть стерильной и обязательно закрываться плотной пробкой или крышкой. Можно использовать специальный контейнер с ложечкой (он продается в аптеках).

4. До стула пациент должен опорожнить мочевой пузырь, чтобы моча при дефекации не попала в испражнения. Саму дефекацию необходимо осуществлять не в унитаз, а в горшок, судно или на пеленку. При этом судно и горшок должны быть хорошо вымыты и ошпарены кипятком, а пеленка проглажена горячим утюгом.

5. Как собрать анализ правильно? Брать материал нужно непосредственно после дефекации, из разных мест и в количестве 6-8 ложечек, которые прилагаются к контейнеру. Если в кале видна кровь, слизь или другие примеси, они забираются в обязательном порядке. После этого емкость плотно закрывается крышкой.

6. Собранный кал необходимо доставить в лабораторию в течение 2-х часов. Дольше хранить его при комнатной температуре нельзя. В крайнем случае, можно оставить материал в холодильнике, но не более, чем на 4 часа. Замораживание не допускается.

7. Сдача кала на дисбактериоз не должна проводиться на фоне лекарственных средств, влияющих на состав кишечной микрофлоры (препараты, содержащие бифидо- и лактобактерии, и антибиотики). Если пациент проходил курс антибактериальной терапии, сдавать анализ можно минимум через 10-15 дней после ее окончания.

 

Забор кала на возбудителей кишечной инфекции  (сальмонеллы, шигеллы) и определение чувствительности к антибиотикам:

Бактериологические исследования проводятся с целью обнаружения патогенных микроорганизмов, приводящих к развитию бактериальной дизентерии, сальмонеллеза.

Основные показания к применению: клинические признаки дизентерии, сальмонеллеза (частый жидкий стул, схваткообразные боли в животе, интоксикация, появление слизи и крови в кале), дифференциальная диагностика других инфекций, вызывающих сходные клинические проявления.

ПОДГОТОВКА К ДИАГНОСТИКЕ

Исследование рекомендуется проводить до лечения медикаментами

ПРОЦЕДУРЫ

  • В прямую кишку вводят на 6 – 8 см  стерильный одноразовый зонд, вращательными движениями собирают материал, зонд вынимают и помещают в стерильную пробирку с транспортной  средой Cary Blair. Срок доставки в лабораторию не более 48 часов  при температуре 20-25 °С. При заборе материала без использования транспортной среды срок доставки материала в лабораторию не более 2 часов.

РЕФЕРЕНТНЫЕ ЗНАЧЕНИЯ

В норме данные возбудители (шигеллы, сальмонеллы) не выявляются.

ФАКТОРЫ, ВЛИЯЮЩИЕ НА РЕЗУЛЬТАТ ИССЛЕДОВАНИЯ

Лечение антибиотиками до забора материала на бактериологическое исследование.

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ

1. Выявление этиологического агента, вызвавшего дизентерию, сальмонеллез 

2. Подбор соответствующей антибактериальной терапии.

 

Забор  отделяемого женских половых органов для бактериологических исследований

ВУЛЬВА, ПРЕДДВЕРИЕ ВЛАГАЛИЩА

Отделяемое берут стерильным ватным тампоном. При воспалении бартолиниевых желез производят их пункцию, при вскрытии абсцесса железы содержимое берут стерильным ватным тампоном. Тампон-зонд  поместить  в коллектор с универсальной транспортной средой (предпочтительно со средой AMIES с активированным углем).

ВЛАГАЛИЩЕ

Материал для исследования берут стерильным тампоном из заднего свода или с патологически измененных участков слизистой. Материал для посева должен быть взят до проведения мануального исследования.  Тампон-зонд  поместить  в коллектор с универсальной транспортной средой (предпочтительно со средой AMIES с активированным углем).

ЦЕРВИКАЛЬНЫЙ КАНАЛ

В течение 24 часов перед забором материала не проводить спринцевание, исключить интравагинальную терапию, не исследовать материал во время менструального цикла.             Перед взятием материала необходимо удалить стерильным ватным тампоном слизь и обработать шейку матки стерильным физиологическим раствором. Произвести забор отделяемого из цервикального канала тампоном-зондом и поместить его в коллектор с универсальной транспортной средой (предпочтительно со средой AMIES с активированным углем). Необходимо пользоваться кольпоскопом. Зонд ввести в цервикальный канал на глубину 0,5-1,5 см. При наличии эрозий цервикального канала необходимо их обработать стерильным физиологическим раствором, и материал следует брать с границы здоровой и измененной ткани. При извлечении тампона-зонда необходимо полностью исключить его касание стенок влагалища. Для посева может быть использован соскоб слизистой, полученный при диагностическом выскабливании стенок цервикального канала.

ПРИДАТКИ МАТКИ

При воспалительном процессе в придатках матки материал из очага инфекции (гной, экссудат, кусочки органов) берется либо при оперативном вмешательстве, либо при проведении диагностической пункции в малом тазу, проводимой через влагалищные своды.

Взятый для исследования материал в транспортной среде может сохраняться до 24 часов при + 4° С. Не допускается замораживание пробы.

Содержимое цервикального канала, полости и придатков матки в норме стерильно.

Любой метод получения материала, требующий инвазивного вмешательства, должен  быть выполнен врачом соответствующей квалификации.

 

Верхние дыхательные пути.

Мазок из зева  (на флору, на выявление S. pyogenes).

Забор материала проводят до еды или через 2 часа после еды.

Методика забора материала.

Прижать язык шпателем. Отобрать стерильным тампоном материал с задней стенки глотки, обеих миндалин (или их ложа в случае тонзиллэктомии) и участков воспаления.

Сроки и температурные условия транспортировки материала в лабораторию.

В пробирке без среды – не более 2 часов при комнатной температуре. В транспортной среде – не более 12 часов при комнатной температуре.

 

Забор материала из носоглотки на выявление N. meningitidis.

Методика забора материала.

Назофарингеальную слизь с задней стенки глотки берут натощак или 3-4 часа после еды стерильным ватным тампоном. Материал берут с обязательным надавливанием шпателем на корень языка для наиболее полного открытия глоточного отверстия. Тампон вводят ватным концом кверху за мягкое небо в носоглотку и проводят 2-3 раза по задней стенке. При извлечении из носоглотки тампон не должен касаться окружающих тканей (зубы, слизистая щек, язык, небный язычек). После извлечения из носоглотки тампон с носоглоточной  слизью немедленно доставляют в лабораторию или  помещают в транспортировочную среду для немедленной доставки в лабораторию.

Допускается применение готовых питательных транспортировочных сред, разрешенных к применению в Российской Федерации в установленном порядке.(среда Амиес с углем и без угля).

 

Забор материала  при инфекционно-воспалительных процессах уха.

Методика забора материала.

При наружном отите:

Обработать кожу 70%-м этиловым спиртом, промыть стерильным физиологическим раствором. Собрать отделяемое  из очага на стерильный одноразовый зонд-тампон тубсера или коллектора с транспортной средой.

При поражении среднего и внутреннего уха:

Собрать  пунктат  или другой материал, полученный во время операции. Собрать материал в коллектор с транспортной средой для анаэробов, или стерильный одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой.

Тимпаноцентез:

Только при неэффективности проводимой АБТ. Шприцем собрать жидкость из барабанной полости. Доставлять в стерильном одноразовом контейнере с завинчивающейся крышкой или в закрытом шприце с предварительно удаленным воздухом.

Сроки и температурные условия транспортировки материала в лабораторию.

В пробирке без среды - не более 2 часов при комнатной температуре, при использовании транспортных сред не более 48 часов при комнатной температуре.

 

Забор отделяемого открытых инфицированных ран.

Методика забора материала.

Кожу вокруг раны обработать антисептиком, удалить с помощью стерильной салфетки некротические массы, детрит, гной. С помощью шприца забирают аспират или стерильным тампоном берут материал круговыми вращательными движениями от центра к периферии.

Сроки и температурные условия транспортировки материала в лабораторию.

Материал в шприце или на сухих тампонах должен быть немедленно доставлен в лабораторию.

В коллекторе с транспортной средой хранение до 48 часов при комнатной температуре.

 

Нижние дыхательные пути. Забор мокроты.

Суточная мокрота не пригодна для культурального исследования.

 

Свободно отделяемая мокрота:

Забор материала для бактериологического исследования

1. Желателен сбор первой утренней порции мокроты (количество мокроты больше утром, вследствие ее накопления в бронхиальном дереве в течение ночи).

2. Перед сбором мокроты больной чистит зубы и полощет рот и горло водой (для уменьшения степени контаминации орофарингеальной флорой). Следить за тем, чтобы в материал не попадала слюна и отделяемое носоглотки (для уменьшения степени контаминации орофарингеальной флорой).

3. Сбор материала производить после глубокого откашливания (чтобы получить материал именно из нижних дыхательных путей) в стерильную закрывающуюся посуду.

Индуцированная мокрота:

1. Предварительный этап подготовки к забору материала такой же, как при сборе свободно отделяемой мокроты.

2. Ингалировать 200 мкг (2 дозы) сальбутамола (с использованием дозированного аэрозольного ингалятора).

3. Через 10–15 минут, используя ультразвуковой небулайзер, ингалировать 3%-й раствор NaCI в течение 7 минут.

4. Прополоскать рот водой. Сбор материала производить после глубокого откашливания (чтобы получить материал именно из нижних дыхательных путей) в стерильную закрывающуюся посуду.

5. Если мокрота не отходит, дополнительно ингалировать через ультразвуковой небулайзер 4%-й раствор NaCl в течение 7 минут.

6. Выполнить п. 3.

7. Если мокрота не отходит, дополнительно ингалировать через ультразвуковой небулайзер 5%-й раствор NaCl в течение 7 минут.

8. Выполнить п. 3.

9. При отсутствии эффекта возможно повторение процедуры индуцирования мокроты на следующий день, утром.

Сроки и температурные условия транпортировки материала в лабораторию.

Собранный образец должен быть доставлен в лабораторию немедленно (образец должен быть посеян в течение 2 часов от момента забора).

 Если невозможно доставить материал в лабораторию немедленно, хранить образец в холодильнике при температуре от +2до +8 ºС, но не более 6 часов.

 

Забор материала при инфекционно-воспалительных процессах глаз.

Материал собирает врач-офтальмолог!

Методика забора материала.

Материал собирают с конъюнктивы, края век, роговицы.

1. Конъюнктива:

Используют стерильные сухие  зонды-тампоны, которыми забирают гнойное содержимое с внутренней поверхности нижнего века движением к внутреннему углу глазной щели. Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками).

2.Край век :

Корочки гноя удаляют пинцетом. Забирают материал из язвочки у основания ресниц сухим тампоном или другим стерильным инструментом.

3.Роговица:

Материал на исследование, после обезболивания, берут сухим тампоном или другим стерильным инструментом. Если больной применяет контактные линзы, необходимо исследовать их внутреннюю поверхность.

Материал на сухих тампонах немедленно доставляют в лабораторию для посевов. При невозможности немедленной доставки используют транспортные среды.

Порядок исследования материала на холеру в зависимости от времени отбора и доставки его в лабораторию в 1-% пептонной воде.

(в соответствии с МУК 4.2.2218-07 « Лабораторная диагностика холеры»)

 

Время взятия материала Время доставки в лабораторию Среда для взятия проб Назначение среды 1-я среда накоплени 2-я среда накопления.(Высевс 1-й среды накопления) Высев со 2-ой среды накопления
В ЛПО В бакотделении КДЛ
  8-00 – до конца рабочего дня лаборатории После 8-00 в течение раб. дня лабора-тории 1% п.в. 5-10 мл. Транспорт-ная среда Посев 5-10 мл. среды с материалом в 50 мл. 1% п.в. с ТК 8-00 следующего дня пересев в 1% п.в., высев на Щ.А. Через 6 часов инкубации на Щ.А.
Выходные дни лаборатории До 10-00 раб. днялабора-тории 1% п.в. с т.к. 50 мл Транспорт-ная среда Посев 5-10 мл. среды с материалом в 50 мл.1% п.в. Через 6 часов инкубации пересев в 1% п.в. с т.к., высев на Щ.А. В начале следующего рабочего дня на Щ.А.

 

Пробы в 5-10 мл 1% пептонной воды без теллурита калия до отправки в лабораторию сохраняют при комнатной температуре 24 +- 1,0 град.С.   до 24 часов. На период выходного дня лаборатории пробы в 50 мл 1% пептонной воды с теллуритом калия допускается сохранять до начала исследования при температуре (20,0 +- 1,0 град.С) – 60 час., (27,0+-3град.С) – 48 час.

Пробы сохраняют в биксах, ящике, шкафу и т.д. в специально выделенной комнате, закрывающейся на замок.

Флаконы с 1% петонной воды с теллуритом калия хранятся в холодильнике не более 2 суток

Пробирки с 1% петонной водой без теллуритом калия хранится в холодильнике не более 14 суток

 

Забор и доставка материала на дифтерию. (МУК 4.2.3065-13)

  1. Для взятия материала используют сухие стерильные ватные тампоны
  2. Материал из ротоглотки и носа берут отдельными тампонами натощак или не ранее чем через 2 часа после еды.
  3. Взятие материала осуществляют при хорошем освещении, с использованием шпателя, не касаясь тампоном языка, щек, зубов. Одним тампоном собирают материал с миндалин, дужек мягкого неба, небного язычка, при необходимости – с задней стенки глотки. При наличии налетов патологический материал забирают с границы пораженных и здоровых тканей. Другим тампоном забирают материал из носа, вводя его глубоко сначала в один, а затем в другой носовой ход.
  4. При дифтерии других локализаций (глаза, уши, кожа, раны, гениталии и пр.) помимо материала из пораженных участков забирают материал из ротоглотки и носа.
  5. При прямой ларингоскопии материал собирают непосредственно из гортани
  6. Сухие тампоны должны быть доставлены в лабораторию не позднее чем через 3 часа после взятия материала.
  7. При проведении обследований в ЛПО во второй половине дня, выходные дни материал из ротоглотки и носа засевают площадкой с последующим рассевом на одну чашку Петри с питательной средой, разделенной пополам. После этого посевы помещают в термостат на 37 град. С  до утра следующего дня, после чего доставляют в лабораторию с указанием времени посева материала. Инструктаж о правилах взятия и посева материала на питательные среды проводится в бактериологическом отделении КДЛ. Чашки Петри с питательными средами получают в ЛПО из лаборатории, хранят в холодильнике при + 4-6 град. С не более 3 дней.  Перед взятием и посевом материала чашки достают из холодильника и согревают до комнатной температуры.

ИЛИ

  1. При проведении обследований в ЛПО во второй половине дня, выходные дни допускается засевать материал в пробирки с транспортной средой, которую готовят в лаборатории. Использование коммерческих   питательных сред, предназначенных для исследования на микрофлору ротоглотки и носа НЕ ДОПУСКАЕТСЯ!!!! В случае использования транспортной среды, приготовленной в лабораторных условиях материал забирают сухим тампоном и опускают его в другую пробирку с транспортной средой и ставят в термостат на 37 град.С.  На следующий день пробирку доставляют в лабораторию для последующего посева. Инструктаж о правилах взятия и посева материала на транспортные питательные среды проводится в бактериологическом отделении КДЛ. Пробирки с транспортными средами получают в ЛПО из лаборатории, хранят в холодильнике при + 4-6 град. С не более 10 дней. Перед взятием и посевом материала пробирки достают из холодильника и согревают до комнатной температуры.

В направлении  не забывать указывать дату и время посева на транспортные или питательные среды!

 

Взятие материала на коклюш 

1 Материала забирают натощак или через 2-3 часа после еды.

2  Для взятия материала используют сухие стерильные тампоны, изогнутые под тупым углом 110-120 град., их можно изогнуть при извлечении из пробирки.

3 Медицинский работник левой рукой фиксирует с помощью шпателя корень языка, а правой вводит тампон в полость рта, продвигая его за корень языка. Тампон не должен касаться щек, языка и миндалин.

4 Кончиком тампона и выпуклой его частью касаются задней стенки глотки, проводя по ней справа  налево 2-3 раза.

5 Затем также осторожно над шпателем извлекают тампон из полости рта.

6 Тампон опускают в пробирку и немедленно доставляют в бактериологическую лабораторию.

7 На доставляемый в лабораторию материал должно быть оформлено стандартное направление с обязательным указанием вакцинального статуса и  даты заболевания.


« Вернуться